大鼠脂肪的分离
将手术切取的大鼠脂肪组织尽量剪碎后移至离心管,其余步骤与人脂肪的分离一致。
经手术切除获得的大鼠皮下脂肪组织消化后原代培养24 h,且肉眼观察会发现培养瓶底部贴附着一层网状薄膜,轻轻摇晃培养瓶可使这层网状薄膜从瓶壁上脱落,镜下观 察发现大部分细胞都附着于这层膜上,通过术获取的人脂肪组织消化后则无此现象。增加胶原酶的量和消化时间也无法避免,取材时的或脂肪间结缔组织未被完全消化,穿过细胞筛进入了培养瓶并沉淀于瓶底部形成的。胶原蛋白酶虽然可以特异性水解胶原蛋白的三维螺旋结构,但不会损伤其他蛋白质。处理方法是37 ℃下用胰蛋白酶 消化5 min。然后利用40 μm的细胞筛过滤后传代。 根据作者的经验,每毫升手术切除的大鼠脂肪可分离基质血管成分细胞约1.81×106个。原代培养2.24×10^7个大鼠基质血管成分细胞,40 h后传代时约剩余 6.2×10^6个细胞,细胞剩余率27%。
细胞传代培养
操作步骤
1.将长满细胞的培养瓶中原来的培养液弃去。
2、加入0.5- -1ml 0.25%胰酶溶液,使瓶底细胞都浸入溶液中。
3、瓶口塞好橡皮塞,细胞,放在倒置镜下观察细胞。随着时间的推移,原贴壁的细胞逐渐趋于圆形,在还未*起时将胰酶弃去,加入10m培养液终止消化。观察消化也可以用肉眼,当见到瓶底发白并出现细zhen孔空隙时终止消化。一般室温消化时间约为1- -3分钟。
4、用吸管将贴壁的细胞吹打成悬液,分到另外两到三瓶中,实践培养液塞好橡皮塞,置37°c下继续培养。第二天观察贴壁生长情况。
附:消化液配制方法:
称取0.25克胰酶蛋白酶(活力为1 : 250), 加入100ml无ca2 、mg2 的hanks液溶解,流式细胞实验,滤器过滤chu菌,4°c保存,用前可在379c下回温。胰酶溶液中也可加入edta,使*终浓度达0.02%。
细胞elispot检测
1.培养板的预处理:在24孔培养板内加0.5ml 0.2%戊er醛,37℃,4h,弃掉板中的处理液,用pbs洗涤3次,每次3min;
2.*原包被:将适量*原溶于包被缓冲液中,每孔加入0.5ml,4℃过夜,pbs-t洗涤3次,每次3min;
3.制备细胞悬液:将待测已致敏小鼠处死,取出pi脏,置于加有hanks液的平皿内,用钝头直角9号zhu射器针头*少许脾被膜后,赶出细胞,用毛细吸管轻轻吹散细胞团后,将悬液通过250目尼龙网,取滤液,1000r/min离心5min,hanks液洗涤3次,计数细胞后,用1640液重新悬浮细胞,配成所需浓度;
4.往各孔中加入0.5ml含不同浓度(104-106/ml)的细胞悬液,置37℃,5%co2条件下孵育2-4h,弃掉培养液,pbs-t洗涤3次,动物细胞培养,每次3min;
5.往各孔中加入0.5ml生物素化*ti(bio-ab)(2μg/ml),37℃孵育1h或4℃过夜,弃掉液体,pbs-t洗涤3次,每次3min;
6.加入辣根过氧化物酶结合的亲合素(avi-hrp)(2μg/ml),37℃孵育30min,弃掉液体,pbs-t洗涤3次,每次3min;
7.配制明胶-底物液:在37℃水浴中,将2.5mltmb溶液(4mg/ml jia醇溶液)滴加入7.5ml10%明胶溶液(用ph5.0*钠-柠檬酸缓冲液配制)边加边搅,溶液呈白色,加入14μl 3% h202;
8.显色与计数:将培养板底冰浴,每孔加入0.6ml明胶-底物液,约3min,混合液凝固,将培养板取出,细胞生物学实验,置室温5min,将板倒置,用肉眼和低倍放大镜计数所显示出的颜色的斑点。
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